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原名:Conversion of SIC to SOC enhances soil carbon sequestration and soil structural stability in alpine ecosystems of the Qinghai-Tibet Plateau.译名:无机碳(SIC)向有机碳(SOC)的转化增强了青藏高原高寒生态系统的土壤固存和土壤结构稳定性。期刊:Soil Biology and BiochemistryIF:9.7发表日期:2024.8(网络首发2024.5)第一作者:马云桥 青海大学高原生态与农业国家重点实验室(李希来课题组)一、背景陆地生态系统储存了大量的有机碳(SOC)和无机碳(SIC),土壤有机碳和土壤无机碳由非生物和微生物因素驱动具有潜在动态相互关系,对土壤结构和固碳有重要影响(图1)。同时青藏高原约占国土面积的五分之一,是我国巨大的碳库,因此对该区域生物和非生物因子介导的土壤有机碳和无机碳动态转化过程和机制研究显得尤为重要。图1 微生物驱动的有机碳和无机碳周转关系示意图二、科学问题(1)评估不同空间尺度下不同植被类型中聚集体的组成和稳定性;(2)量化SOC、MBC、DOC、SIC和碳水解酶酶活性(α-葡萄糖苷酶和β-葡萄糖苷酶)的分布,以及不同植被类型不同土壤团聚体中细菌和真菌群落的组成和多样性;(3)分析调控团聚体...
发布时间: 2024 - 07 - 01
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发布时间: 2021 - 11 - 16
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今天,栢晖生物给大家整理了如何通过比色法测定植物中有效磷的含量,具体流程如下:一、试剂所有试剂除注明者外,均为分析纯。1.1 10%(w/v)的HClO4:取7.874ml 72% 的HClO4定容至100ml。1.2 5%(w/v)的HClO4:取 39.3676ml 72%的HClO4定容至1L。1.3 硫酸-钼酸铵溶液(溶液A)1)溶解1.0g钼酸铵(NH4)6MO7O24·4H2O于约100ml水中; 2)然后徐徐加入6.25ml浓H2SO4(98%); 3)充分混匀,冷却后定容至250ml。  1.4 10%(w/v)抗坏血酸(VC)溶液(溶液B):溶解10g抗坏血酸于水中,溶解后定容至100ml,储存于棕色瓶中,4℃保存。  1.5 工作液:按体积比6:1混合溶液A和溶液B注:工作液需要每天配置,现配现用,配好后放置2小时后再使用。1.6 磷标准溶液的配制(60ppm ):准确称取0.230g磷酸二氢铵(NH4H2PO4)于水中,并定容至100ml,即得600ppm的磷标液。将600ppm的磷标液用提取剂【1:9(10% HClO4:5% HClO4)】稀释10倍,得60ppm的磷标准溶液。二、主要仪器万分之一分析天平、紫外可见分光光度计、恒温振荡机或往返式振荡机、酸度计 三、试样的制备取新鲜样本剪碎充分混匀后,装入样本瓶放在4℃备用。四、分析步骤4.1 称取0.5g鲜样称重m,用液氮研磨成粉末。待研钵温度上升后,加入1ml 10%HClO4研磨混匀。 4.2 在研钵中分两次加入4.5mL的5%高氯酸,共计9ml。第一次加入4.5mL 5%高氯酸到研钵中后,将匀浆液转移到新的10ml离心管中;第二次再加入4.5mL 5%高氯酸到研钵中后,尽量洗净研钵中的样品,再将液体继续转移到第一次的10ml离心管中。4.3 在冰上放置30min,每隔5min上下颠倒混匀几次。则样品制备溶液为10ml(V=1ml+9ml=10ml=0.01L)  于4℃,10000g离心10min,取5ml上清液至新的离心管中,用于有效磷的测定(钼蓝法)。 4.4 取1ml(V1)上清液,在上清液中加入2ml的工作液,则反应液为3ml(V2=上清液+工作液),反应液于40℃温育20min。 4.5 反应液在室温冷却后,观察蓝色深浅,对蓝色过深的样品可适当稀释,地上部一般要稀释5倍。每个样品吸取200ul到酶标板中,于820nm可见光波下用酶标仪测定吸收值。4.6 标准曲线的绘制:将60ppm的磷标液用提取剂稀释,形成稀释标液。再与工作液反应,生成如下系列标准反应液溶液。用...
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发布时间: 2021 - 11 - 12
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深秋时分,银杏叶四处飘散的景象令人着迷,踏上去如行走在棉花糖上...据相关资料显示,银杏叶为银杏科植物银杏Ginkgo biloba L .的干燥叶。其主要含黄酮类(flavonoids)和萜烯内酯(terpene)类化合物。据医学药理研究证实,银杏叶黄酮具有抗炎症、抗环腺苷酸乙酯酶活性、抗组胺活性等多种效用。今天,栢晖生物就给大家梳理一下如何通过比色法测定植物中黄酮的含量。一、试剂所有试剂除注明者外,均为分析纯。1.1 芦丁对照品、80%乙醇、30%乙醇、1.2 0.05g/ml NaNO2:称取1.7225g亚硝酸钠定容到500ml。1.3 0.1g/ml Al(NO3)3:称取18.7565g硝酸铝定容到500ml。1.4 0.04g/ml NaOH溶液:称取0.8g氢氧化钠定容到500ml。二、主要仪器万分之一分析天平、紫外可见分光光度计三、试样的制备取风干的实验室待测样品充分混匀后,粉碎,籽粒全部通过 0.25mm(秸秆通过 0.5mm)孔径筛,装入样品瓶备用。四、分析步骤4.1 试样溶液制备取待测样品,研细,精密称取约0.3g,用80%乙醇回流提取2次(每次用30ml)过滤,滤液合并后蒸干,用30%乙醇溶解并定容至10ml。4.2 标准曲线绘制标准工作曲线的绘制:精密量取芦丁对照品溶液0.0、0.1、0.2、0.4、0.6、0.8、1.0ml到10ml容量瓶中,各加入30%乙醇至1.0ml,加入0.5ml 0.05g/ml NaNO2溶液,放置6min后再加入0.3ml0.1g/ml Al(NO3)3溶液,摇匀,放置6min后加入3ml 0.04g/ml NaOH溶液,用水定容至标线,摇匀,放置15min,在510nm处测定吸光度,以吸光度为纵坐标,芦丁对照品溶液的浓度为横坐标,绘制标准工作曲线。4.3 样品的测定精密量取样品溶液1.0ml,置于10ml容量瓶中,按照标准工作曲线绘制的方法,自加入0.5ml 0.05g/ml NaNO2溶液起依次测定吸光度,从标准工作曲线上查得样品溶液中芦丁的浓度,作为总黄酮的浓度,再计算求得总黄酮的含量。五、结果计算式中:C——从标准曲线查得黄酮的含量,μg/g;N——稀释倍数;Vt——提取液总体积,ml;Vs——测定取液量,ml;0.001——将μg换算为mg;m——样品称重量。所得结果应保留小数点后三位
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发布时间: 2021 - 11 - 09
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一年一度的双十一如期而至,为回馈各位新老用户长期以来的信赖与支持,栢晖生物特别推出“预存”优惠活动!活动规则:0,送预存费用×5%检测服务费5万元≤预存检测费用,送预存费用×8%检测服务费10万元≤预存检测费用,送预存费用×10%检测服务费例:预存2万元,即可享价值21000元检测服务。另:特殊检测项目不参与此次活动,请知晓。活动时间:2021年11月11日-2021年12月31日参与方式(二选一即可):1、关注微信公众号“栢晖”回复“预存活动”即可报名参与 。2、直接扫码添加我司此次活动专项负责人微信登记参与(18682730999)。
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发布时间: 2021 - 11 - 04
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译名:北方针叶林自然氮供给梯度下外生菌根菌丝体的碳-氮关系原名:Carbon-nitrogen relations of ectomycorrhizal mycelium across a natural nitrogen supply gradient in boreal forest期刊名称:New Phytologist影响因子: 10.151 (2020)第一作者:Höberg, M, N摘要:树木向外生菌根(ECM)真菌供应的光合作用固定碳(C)是随着植物氮(N)供给的增加而减少,然而植物氮供给的变化是如何影响真菌营养及其生长仍有待阐明。作者在一个自然土壤N供给梯度下的北方针叶林样地,采用放置装填石英砂的网袋的方法,加入有机N(15N-,13C-标记)源或不加,测定ECM外延菌丝的生长及其对C和N的利用。研究发现:随着N供给的增加,菌丝C:N比下降。在低N供给水平下,但外加N促进菌丝生长。菌丝对外加C、N的吸收与C、N的供给呈反比关系。当背景N含量较低时,菌丝对外加N的利用越高;当光合固定C较低时,菌丝对外加C的利用越高。本文认为当土壤N缺乏且乔木对ECM真菌的地下碳分配较高时,ECM的生长受N限制;而当土壤N供给较高且乔木对ECM真菌的碳分配较低时,ECM真菌的生长受C限制。这说明在低养分供给情况下,北方针叶林ECM真菌在土壤N留存中发挥重要的作用,而在养分丰富的情况下,其重要性下降。  研究背景:大量的研究表明外加N促进了北方温带ECM森林的植被生产力。然而,在野外原位的植物-土壤条件下,ECM真菌对N供给变化的生理响应的认识仍十分缺乏。通常,植物生长受到N限制,而土壤微生物则受到C限制。ECM真菌依赖于宿主植物的光合C供应,这种供应的减少可能导致ECM的C缺乏并改变其生物量、物种丰富度和群落组成。目前,ECM真菌树木仅仅作为树木根系系统的延伸,或者其生长于宿主一样,也受到大多数北方森林土壤低N供给的限制,这仍然是一个悬而未决的问题。由于树木地下C分配和养分供给的季节和空间差异性,ECM共生体对N供给变化的响应可能更加敏感且多样化。本研究聚焦于不同碳、氮供应条件下土壤中ECM外延菌丝的碳氮关系及生理特性。我们假设,当树木响应低N有效性,光合作用产物的地下C分配相对较高,ECM与植物同时受到N-限制,N添加能刺激ECM菌丝的生长;而当土壤N有效性高时,由于树木的地下C分配量低,菌丝生长受到C-限制。研究旨在检验:(1)氮贫乏森林ECM菌丝的生产是否受到N限制?(2)随着自然氮供应的增加和树下碳分配的减少,菌丝生长的N限制...
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发布时间: 2021 - 11 - 01
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土壤中氮的来源一般有以下几方面:施入土壤中的化学氮肥和有机肥料、动植物残体的归还、生物固氮、雷电降雨带来的等等,目前,施入土壤中的肥料是土壤氮的主要来源。今天栢晖生物给大家整理了如何通过碱解扩散法测定土壤水解性氮一、试剂(1)1.0mol/L氢氧化钠溶液:称取化学纯氢氧化钠40 g,用蒸馏水溶解后冷却定容到1000 ml。(2)1.2mol/L氢氧化钠溶液:称取化学纯氢氧化钠48 g,用蒸馏水溶解定容到1000 ml。(3)1.8mol/L氢氧化钠溶液:称取化学纯氢氧化钠72 g,用蒸馏水溶解后冷却定容到1000 ml。 (4)2%硼酸溶液:称取20 g硼酸,用热蒸馏水(约60℃)溶解,冷却后稀释至1000ml,用稀盐酸或稀氢氧化钠调节pH至4.5(定氮混合指示剂显葡萄酒红色)。 (5)0.005mol/L(1/2 H2SO4)硫酸标准溶液:量取H2SO4 2.83 mL,加蒸馏水稀释至5000 mL,然后用标准碱或硼酸标定之,此为0.0200mol/L(1/2 H2SO4)标准溶液,再将此标准溶液准确的稀释4倍,即得0.0050mol/L(1/2 H2SO4)的标准液。(6)定氮混合指示剂:0.5g溴甲酚绿和0.1g甲基红溶于100ml乙醇中。 (7)特制胶水:阿拉伯胶(称取40g粉状阿拉伯胶,溶于50 ml蒸馏水中)在烧杯中热温至70—80℃,搅拌促溶,约1小时后放冷。加入甘油20 mL,饱和碳酸钾水溶液20 mL,搅拌、放冷。离心去除泡沫和不溶物,清液贮于具塞玻璃瓶中备用。(最好放置在盛有浓硫酸的干燥器中以除去氨) (8)硫酸亚铁(粉状) :将分析纯硫酸亚铁磨细保存于阴凉干燥处。二、主要仪器 扩散皿、微量滴定管、1/1000分析天平、恒温箱、玻璃棒、毛玻璃、皮筋、吸管(2 ml和10 ml),腊光纸、角匙、瓷盘。三、试样的制备 称取通过18号筛(孔径1 mm)风干样品2.000 g(精确到0.001g)和1 g硫酸亚铁粉剂,均匀铺在扩散皿外室内,水平地轻轻旋转扩散皿,使样品铺平。(水稻土样品则不必加硫酸亚铁。) 四、分析步骤1. 用吸管吸取2%硼酸溶液2 ml,加入扩散皿内室,并滴加1滴定氮混合指示剂,然后在皿的外室边缘涂上特制胶水,盖上毛玻璃,并旋转数次,以便毛玻璃与皿边完全粘合,再慢慢转开毛玻璃的一边,使扩散皿露出一条狭缝,迅速用移液管加入10 ml 1.8 mol/L氢氧化钠于皿的外室(水稻土样品则加入10 ml 1.2 mol/L氢氧化钠),立即用毛玻璃盖严。2. 水平...
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