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文献解读原名:Climate controls on nitrate dynamics and gross nitrogen cycling response to nitrogen deposition in global forest soils译名:气候控制对全球森林土壤硝态氮动态和总氮循环对氮沉降的响应期刊:Science of the Total EnvironmentIF:11.6发表时间:2024.2第一作者:Ahmed S. Elrys摘要了解氮素转化及其对氮富集响应的调控模式和控制措施,对于重新评估土壤氮素的限制或有效性及其环境后果至关重要。然而,气候条件如何影响森林土壤中硝态氮的动态以及总氮循环速率对氮富集的响应仍然只是初步了解。通过收集和分析来自231个15N标记研究的4426个独立观察和769个配对观察。研究发现,热带/亚热带森林土壤的硝化能力[总自养硝化(GAN)与总氮矿化(GNM)之比](19%)显著低于温带森林土壤(68%),这主要是由于低碳氮比和高降水分别导致热带/亚热带森林土壤的GNM和GAN较高。热带/亚热带森林土壤的硝态氮保持能力[同化硝态氮还原成铵态氮(DNRA) 和总硝态氮固定(INO3)之和与总硝化的比值](86%)显著高于温带森林土壤(54%),这主要是由于热带/亚热带地区的降水和GNM较高,刺激了DNRA和INO3。结果表明,在温带土...
发布时间: 2024 - 03 - 13
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发布时间: 2021 - 11 - 12
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深秋时分,银杏叶四处飘散的景象令人着迷,踏上去如行走在棉花糖上...据相关资料显示,银杏叶为银杏科植物银杏Ginkgo biloba L .的干燥叶。其主要含黄酮类(flavonoids)和萜烯内酯(terpene)类化合物。据医学药理研究证实,银杏叶黄酮具有抗炎症、抗环腺苷酸乙酯酶活性、抗组胺活性等多种效用。今天,栢晖生物就给大家梳理一下如何通过比色法测定植物中黄酮的含量。一、试剂所有试剂除注明者外,均为分析纯。1.1 芦丁对照品、80%乙醇、30%乙醇、1.2 0.05g/ml NaNO2:称取1.7225g亚硝酸钠定容到500ml。1.3 0.1g/ml Al(NO3)3:称取18.7565g硝酸铝定容到500ml。1.4 0.04g/ml NaOH溶液:称取0.8g氢氧化钠定容到500ml。二、主要仪器万分之一分析天平、紫外可见分光光度计三、试样的制备取风干的实验室待测样品充分混匀后,粉碎,籽粒全部通过 0.25mm(秸秆通过 0.5mm)孔径筛,装入样品瓶备用。四、分析步骤4.1 试样溶液制备取待测样品,研细,精密称取约0.3g,用80%乙醇回流提取2次(每次用30ml)过滤,滤液合并后蒸干,用30%乙醇溶解并定容至10ml。4.2 标准曲线绘制标准工作曲线的绘制:精密量取芦丁对照品溶液0.0、0.1、0.2、0.4、0.6、0.8、1.0ml到10ml容量瓶中,各加入30%乙醇至1.0ml,加入0.5ml 0.05g/ml NaNO2溶液,放置6min后再加入0.3ml0.1g/ml Al(NO3)3溶液,摇匀,放置6min后加入3ml 0.04g/ml NaOH溶液,用水定容至标线,摇匀,放置15min,在510nm处测定吸光度,以吸光度为纵坐标,芦丁对照品溶液的浓度为横坐标,绘制标准工作曲线。4.3 样品的测定精密量取样品溶液1.0ml,置于10ml容量瓶中,按照标准工作曲线绘制的方法,自加入0.5ml 0.05g/ml NaNO2溶液起依次测定吸光度,从标准工作曲线上查得样品溶液中芦丁的浓度,作为总黄酮的浓度,再计算求得总黄酮的含量。五、结果计算式中:C——从标准曲线查得黄酮的含量,μg/g;N——稀释倍数;Vt——提取液总体积,ml;Vs——测定取液量,ml;0.001——将μg换算为mg;m——样品称重量。所得结果应保留小数点后三位
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发布时间: 2021 - 11 - 09
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一年一度的双十一如期而至,为回馈各位新老用户长期以来的信赖与支持,栢晖生物特别推出“预存”优惠活动!活动规则:0,送预存费用×5%检测服务费5万元≤预存检测费用,送预存费用×8%检测服务费10万元≤预存检测费用,送预存费用×10%检测服务费例:预存2万元,即可享价值21000元检测服务。另:特殊检测项目不参与此次活动,请知晓。活动时间:2021年11月11日-2021年12月31日参与方式(二选一即可):1、关注微信公众号“栢晖”回复“预存活动”即可报名参与 。2、直接扫码添加我司此次活动专项负责人微信登记参与(18682730999)。
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发布时间: 2021 - 11 - 04
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译名:北方针叶林自然氮供给梯度下外生菌根菌丝体的碳-氮关系原名:Carbon-nitrogen relations of ectomycorrhizal mycelium across a natural nitrogen supply gradient in boreal forest期刊名称:New Phytologist影响因子: 10.151 (2020)第一作者:Höberg, M, N摘要:树木向外生菌根(ECM)真菌供应的光合作用固定碳(C)是随着植物氮(N)供给的增加而减少,然而植物氮供给的变化是如何影响真菌营养及其生长仍有待阐明。作者在一个自然土壤N供给梯度下的北方针叶林样地,采用放置装填石英砂的网袋的方法,加入有机N(15N-,13C-标记)源或不加,测定ECM外延菌丝的生长及其对C和N的利用。研究发现:随着N供给的增加,菌丝C:N比下降。在低N供给水平下,但外加N促进菌丝生长。菌丝对外加C、N的吸收与C、N的供给呈反比关系。当背景N含量较低时,菌丝对外加N的利用越高;当光合固定C较低时,菌丝对外加C的利用越高。本文认为当土壤N缺乏且乔木对ECM真菌的地下碳分配较高时,ECM的生长受N限制;而当土壤N供给较高且乔木对ECM真菌的碳分配较低时,ECM真菌的生长受C限制。这说明在低养分供给情况下,北方针叶林ECM真菌在土壤N留存中发挥重要的作用,而在养分丰富的情况下,其重要性下降。  研究背景:大量的研究表明外加N促进了北方温带ECM森林的植被生产力。然而,在野外原位的植物-土壤条件下,ECM真菌对N供给变化的生理响应的认识仍十分缺乏。通常,植物生长受到N限制,而土壤微生物则受到C限制。ECM真菌依赖于宿主植物的光合C供应,这种供应的减少可能导致ECM的C缺乏并改变其生物量、物种丰富度和群落组成。目前,ECM真菌树木仅仅作为树木根系系统的延伸,或者其生长于宿主一样,也受到大多数北方森林土壤低N供给的限制,这仍然是一个悬而未决的问题。由于树木地下C分配和养分供给的季节和空间差异性,ECM共生体对N供给变化的响应可能更加敏感且多样化。本研究聚焦于不同碳、氮供应条件下土壤中ECM外延菌丝的碳氮关系及生理特性。我们假设,当树木响应低N有效性,光合作用产物的地下C分配相对较高,ECM与植物同时受到N-限制,N添加能刺激ECM菌丝的生长;而当土壤N有效性高时,由于树木的地下C分配量低,菌丝生长受到C-限制。研究旨在检验:(1)氮贫乏森林ECM菌丝的生产是否受到N限制?(2)随着自然氮供应的增加和树下碳分配的减少,菌丝生长的N限制...
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发布时间: 2021 - 11 - 01
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土壤中氮的来源一般有以下几方面:施入土壤中的化学氮肥和有机肥料、动植物残体的归还、生物固氮、雷电降雨带来的等等,目前,施入土壤中的肥料是土壤氮的主要来源。今天栢晖生物给大家整理了如何通过碱解扩散法测定土壤水解性氮一、试剂(1)1.0mol/L氢氧化钠溶液:称取化学纯氢氧化钠40 g,用蒸馏水溶解后冷却定容到1000 ml。(2)1.2mol/L氢氧化钠溶液:称取化学纯氢氧化钠48 g,用蒸馏水溶解定容到1000 ml。(3)1.8mol/L氢氧化钠溶液:称取化学纯氢氧化钠72 g,用蒸馏水溶解后冷却定容到1000 ml。 (4)2%硼酸溶液:称取20 g硼酸,用热蒸馏水(约60℃)溶解,冷却后稀释至1000ml,用稀盐酸或稀氢氧化钠调节pH至4.5(定氮混合指示剂显葡萄酒红色)。 (5)0.005mol/L(1/2 H2SO4)硫酸标准溶液:量取H2SO4 2.83 mL,加蒸馏水稀释至5000 mL,然后用标准碱或硼酸标定之,此为0.0200mol/L(1/2 H2SO4)标准溶液,再将此标准溶液准确的稀释4倍,即得0.0050mol/L(1/2 H2SO4)的标准液。(6)定氮混合指示剂:0.5g溴甲酚绿和0.1g甲基红溶于100ml乙醇中。 (7)特制胶水:阿拉伯胶(称取40g粉状阿拉伯胶,溶于50 ml蒸馏水中)在烧杯中热温至70—80℃,搅拌促溶,约1小时后放冷。加入甘油20 mL,饱和碳酸钾水溶液20 mL,搅拌、放冷。离心去除泡沫和不溶物,清液贮于具塞玻璃瓶中备用。(最好放置在盛有浓硫酸的干燥器中以除去氨) (8)硫酸亚铁(粉状) :将分析纯硫酸亚铁磨细保存于阴凉干燥处。二、主要仪器 扩散皿、微量滴定管、1/1000分析天平、恒温箱、玻璃棒、毛玻璃、皮筋、吸管(2 ml和10 ml),腊光纸、角匙、瓷盘。三、试样的制备 称取通过18号筛(孔径1 mm)风干样品2.000 g(精确到0.001g)和1 g硫酸亚铁粉剂,均匀铺在扩散皿外室内,水平地轻轻旋转扩散皿,使样品铺平。(水稻土样品则不必加硫酸亚铁。) 四、分析步骤1. 用吸管吸取2%硼酸溶液2 ml,加入扩散皿内室,并滴加1滴定氮混合指示剂,然后在皿的外室边缘涂上特制胶水,盖上毛玻璃,并旋转数次,以便毛玻璃与皿边完全粘合,再慢慢转开毛玻璃的一边,使扩散皿露出一条狭缝,迅速用移液管加入10 ml 1.8 mol/L氢氧化钠于皿的外室(水稻土样品则加入10 ml 1.2 mol/L氢氧化钠),立即用毛玻璃盖严。2. 水平...
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发布时间: 2021 - 10 - 29
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可溶性蛋白指可以以小分子状态溶于水或其他溶剂的蛋白。通常在植物生理、微生物、食品加工等实验中作为重要指标。如可溶性蛋白是植物抗旱性的重要指标之一。今天栢晖生物就给大家分享一下如何通过考马斯亮蓝染色法测定植物中的可溶性蛋白:“1试剂所有试剂除注明者外,均为分析纯。1.1 考马斯亮蓝溶液配制:称取100 mg考马斯亮蓝,溶于50ml 90%乙醇中,加入100ml 85%(W/V)磷酸,再用蒸馏水定容到1L。在过夜后过滤并贮于棕色瓶中,常温下可保存一个月。1.2 90% 乙醇1.3 100 g/ml 牛血清蛋白(BSA)标准溶液:称取10mg BSA定容至100 ml即为100 g/ml。或称取25 mg BSA加蒸馏水水溶解后定容至100 ml,再从中吸取40 ml蒸馏水定容至100ml。1.4 0.05 mol/LpH7.8磷酸配制:A母液,0.2 mol/L磷酸氢二钠溶液:取Na2HPO4·12H2O (分子量358.14)35.85 g,用蒸馏水定容至500 ml。B母液,0.2 mol/L磷酸二氢钠溶液:取NaH2PO4·2H2O (分子量156.01)1.5601 g,用蒸馏水定容到50 ml。1.5 0.05M pH7.8磷酸:分别取A母液228.75ml,B母液21.25ml,用蒸馏水定容至1000ml。“2主要仪器万分之一分析天平、紫外可见分光光度计、离心机“3试样的制备取风干的实验室待测样品充分混匀后,籽粒全部通过 0.25mm(秸秆通过 0.5mm)孔径筛,装入样品瓶备用。“4分析步骤4.1 试样溶液制备样品提取:取鲜样0.2—0.5g,用蒸馏水或缓冲液研磨成匀浆后,3000r/min—4000r/min离心10min,上清液备用。4.2 标准曲线绘制取6支具塞试管,依次加入标液0、0.2、0.4、0.6、0.8、1.0ml,然后用蒸馏水补充至1ml,再向各管中加入5ml考马斯亮蓝试剂,5min左右,以0号试管为空白对照,在595nm下比色测定吸光度,以蛋白质含量为横坐标,以吸光度为纵坐标绘制标准曲线。4.3 样品的测定吸取样品提取液1.0ml(视蛋白质含量适当稀释),放入试管中(每个样品重复两次),加入5ml考马斯亮蓝试剂,摇匀,放置2min待反应完成,在595nm下比色,测定吸光度,并通过标准曲线查蛋白质含量。“5结果计算式中:C—查标准曲线值,g;Vt—提取液总体积,ml;WF—样品鲜重,g;Vs—测定时加样量,ml所得结果应保留小数点后三位
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