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碳是构成有机体的基本元素。植物如何储存、分配和利用碳以适应多变的自然环境,一直是植物学和生态学领域关注的核心问题之一。非结构性碳水化合物(NSC,主要包含可溶性糖、淀粉等不稳定、可被利用的碳源),作为植物生命活动最直接的能量货币参与多种生理代谢功能,是植物响应和适应环境变化的重要缓冲剂,在调控植物生长和环境适应性方面发挥着重要作用。尽管如此,目前基于功能性状的植物资源策略研究框架却很少考虑NSC的重要功能,这极大地限制了植物生态适应机制的深入认识。叶经济学谱和根二维性状谱是近年来植物功能性状领域的重要发现,尤其是根二维性状谱已成为根系性状研究的主流范式。这些重要的发现为探究NSC与植物地上和地下资源获取策略的协调关系提供了绝佳的视角。然而,目前缺乏相关的野外试验研究,针对NSC与叶和根性状谱的关联差异及其环境驱动机制等科学问题的认识尚属空白。基于此,中国科学院成都生物研究所尹华军研究员团队与河南农业大学孔德良教授合作,以青藏高原高寒森林代表性针叶树种为对象(图1),通过分析叶片和细根关键功能性状、非结构性碳水化合物含量及环境因子,基于目前广泛认知的叶经济谱和根系经济空间策略框架,系统探讨了NSC与植物地上-地下经济策略间的协调关系差异及其关键环境驱动因子。研究结果表明,叶片和根系存在差异化的NSC-经济策略协调关系(图2,3)。具体地,在地上,叶片NSC含量,尤其是可溶性糖的储存,...
发布时间: 2024 - 03 - 18
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发布时间: 2021 - 09 - 24
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今天给大家分享一下如何通过比色法对Vc的含量进行测定,如下:一、试剂所有试剂除注明者外,均为分析纯。1. Vc标准液:准确称取抗坏血酸0.1000g,用配好的草酸-EDTA定容至100ml。2. 草酸-EDTA:称取含结晶水的草酸6.3000g,EDTA 0.0584g,充分溶解后定容至1000ml。3. 偏磷酸-乙酸:称取15.0000g偏磷酸于40ml乙酸中,定容至500ml,用滤纸过滤,取滤液备用。4. 5%H2SO4:吸取5ml硫酸稀释至100ml。5.  5%钼酸铵:准确称取钼酸铵25.0000g,定容至500ml。二、主要仪器万分之一分析天平、UV-1800PC紫外可见分光光度计三、试样的制备待测样品混匀后装入塑封袋4℃冷藏备用。四、分析步骤4.1 试样溶液制备称取植物物组织2~5g(根据维生素C含量而定),加5ml草酸-EDTA溶液磨成匀浆,并转入25ml容量瓶中,再用提取介质冲洗研钵及研锤2~3次,冲洗液合并于25ml容量瓶中。取一部分匀浆经3000g离心10min后保存。4.2 标准曲线绘制吸取VC标准溶液 0,0.2,0.4,0.6,0.8,1.0分别置于50mL比色管中,用草酸-EDTA补充至5ml,加入偏磷酸-乙酸0.5ml,加入5%硫酸1ml,再加入5%钼酸铵2ml。加完试剂摇匀后,置30℃水浴中保温15min,用蒸馏水稀释到25 mL刻度,将溶液混匀,用空白管调零,在760nm波长下比色,记录吸光度,以标准维生素C含量为横坐标,吸光度为纵坐标,绘制标准曲线。4.3 样品的测定取1ml上清液与标曲同法测定。若样品显色液中出现沉淀时,可过滤后比色,不影响测定结果。五、结果计算植物组织中维生素C的含量(mg)=式中:C——标准曲线上查得样品中维生素含量(mg);Vt——样品提取液总体积(ml);Vs——测定时用样品液体积(ml);FW——植物组织鲜重(g)。【附注】温度对显色有影响,颜色强度随时间的延长而加深,因此显色温度和加入显色剂的时间要求一致。
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发布时间: 2021 - 09 - 23
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为了给广大高校和科研单位等用户提供更为优质的服务体验和检测效果,栢晖生物近期在检测流程、仪器设备等方面进行再升级!流程更快捷、设备更精密,最快一周出报告!新进仪器设备展示:总有机碳分析仪(TOC)元素分析仪土壤常规检测指标如下:国庆来临之际,栢晖生物特别推出国庆优惠活动!凡送检样品达到一定数量即可参与折扣或直减优惠活动,量大从优!详情可咨询:028-85253068 / 18682730999
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发布时间: 2021 - 09 - 23
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一、试剂1.浓磷酸: ρ(H3PO4)= 1.7 1g/ml2.氯化钾溶液 (KCl) =1mol/L (74.55gKCl, 1L水)3.亚硝酸钠: 优级纯,干燥器中干燥24h。①亚硝酸钠标准储备液: p(NO2- N) = 1000mg/ml; (4.926g 亚硝酸钠,适量水溶解,定容至1L) (存于PE瓶中,4℃,6个月)②亚硝酸钠标准使用液1: p(NO2- N)= 100mg/ml; (10ml 储备液。定容至100ml容量瓶)③亚硝酸钠标准使用液2: p(NO2-N)= 10mg/ml; (10ml 使用液1。定容至100ml容量瓶)4.显色剂: ( 20ml磺胺、20ml盐酸萘基溶液、20ml 浓磷酸与100ml去离子水混合,储于棕色试剂瓶中,4℃保存, 溶液变黑时停止使用)①磺胺溶液 (C6H8N2O2S): (1000ml容量瓶中加入600ml水,再加入200ml浓磷酸,再加入80g磺胺,定容,4℃, 1年)②盐酸N- (1萘基) -乙二胺溶液: (0.4g 该物质溶于100ml水中。4℃保存,溶液颜色变深时停止使用)二、主要仪器振荡器 、离心机 、分光光度计三、试样的制备样品采集。样品保存:样应该在4℃下保存和运输,在3日内分析完毕,否则应该在-20℃ (深度冷冻)下保存。试样制备:采集后去除杂物,混匀,过18目筛,一份测定干物质质量,一份测定亚硝态氮试料制备。四、分析步骤4.1 试样溶液提取称取 40g试样(空白不加试样),放入500ml PE瓶中,加入200mlKCl (物液比1:5), 在20C°恒稳水浴振荡器中振荡提取1h。a)转移约60ml提取液,于100ml聚乙烯离心管中,在3000rpm的条件下分离10min。取离心后上清液50ml于100ml比色管中。(或者在4℃下, 以静置4h的方式代替离心分离,制得试料)4.2 空白溶液制备氯化钾溶液4.3 标准曲线绘制将标准使用液2稀释10倍,制得N02-N 1mg/ml标准使用液3,取7支25ml洁净比色管,分别加入标准使用液3:0,0.1,0.3,0.5,0.7,0.9,1.1ml(相当于分别含N02-N 0,0.1,0.3,0.5,0.7,0.9,1.1mg),加20ml水,加0.2ml显色剂,定容至25ml混匀,室温静置60min后于波长540nm处比色,绘制标准曲线4.4 试样测定取样品提取液适量,其余按标曲,于540nm处比色,记录吸光值。五、结果计算式中:C — 从标曲查的样本测量液中NO2-N含量mg;Vt — 提取液总体积ml;Vc — 测量液体积...
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发布时间: 2021 - 09 - 18
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土壤蔗糖酶是作用物β-D-呋喃果糖苷中未还原的β-D-呋喃果糖苷末端残基的水解酶,能酶促土中蔗糖水解成葡萄糖和果糖。今天,我们就来聊聊如何通过靛酚蓝比色法检测土壤蔗糖酶。一.试剂 (1)3,5-二硝基水杨酸溶液:称0.5g二硝基水杨酸,溶于20ml 2N氢氧化钠和50ml水中,再加18.2g酒石酸钾钠,用水稀释至100ml(不超过7天)。  (2)pH5.5磷酸缓冲液:1/15M磷酸氢二钠(11.867g Na2PO4•2H2O溶于1L蒸馏水中)0.5ml加1/15M 磷酸二氢钾(9.078g KH2PO4溶于1L蒸馏水中)9.5ml即成。 (3)8%蔗糖溶液。 (4)甲苯。  (5)标准葡萄糖溶液:将葡萄糖先在50-58℃条件下,真空干燥至恒重。然后取500mg溶于100ml 12mmol苯甲酸溶液中(5mg还原糖/ml),即成标准葡萄糖溶液。 二.主要仪器万分之一分析天平,恒温箱,水浴锅,分光光度计三.试样的制备取新鲜的实验室待测样品充分混匀后,按四分法缩减至 100g,粉碎,然后全部通过 10目孔径筛,装入样品袋备用。 四.分析步骤  4.1 试样溶液提取称取试样2g,精准至0.001g,置于50ml三角瓶中,注入15ml 8%蔗糖溶液,5ml pH5.5磷酸缓冲液和0.25ml甲苯。摇匀混合物后,放入恒温箱,在37℃下培养24h。到时取出,迅速过滤,滤液供蔗糖酶的测定。4.2 空白溶液制备除不加待测样品外,应用的试剂和步骤操作同4.14.3 对照试样溶液制备除用蒸馏水代替蔗糖溶液外,应用的试剂和步骤操作同4.14.4 标准曲线绘制取0、0.1、0.2、0.3、0.4、0.5、0.6、0.7ml含5mg还原糖/ml的标准葡萄糖溶液到50ml容量瓶中,加3ml 3,5-二硝基水杨酸,并在沸水的水浴锅中加热5min,随即将容量瓶移至自来水流下冷却3min。溶液因生成3-氨基-5-硝基水杨酸而呈橙黄色,最后用蒸馏水稀释至50ml,并在分光光度计上于波长508nm处进行比色。   4.5 试样测定从样品滤液中吸取1ml,若浓度过低,可多取滤液。注入50ml容量量瓶中,加3ml 3,5-二硝基水杨酸,同测定标准曲线同样的方法进行显色比色。     五.结果计算  蔗糖酶活性以24h后1g土壤葡萄糖的毫克数表示。 葡萄糖(...
作者: 土壤微生物组
发布时间: 2021 - 09 - 17
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文献分享       农业实践可以驱动植物相关微生物群落的组成,使植物适应生物和非生物胁迫。研究表明,施用除草剂、杀虫剂和耕作措施可导致根际微生物群落组成的变化,从而影响作物生长表现。通过对单作植物和轮作植物的比较,发现前者的微生物多样性最低。然而,连续单作的影响并不一定是负面的,因为不仅病原体的增加,而且病原体的拮抗微生物也可能富集。我们对种植制度如何影响根际微生物群落的理解仍然有限。这个研究揭示了农业栽培历史对与当前作物相关的根际微生物区系的重要影响,表明了根际微生物组的组装与植物生长表现相关。连续单作后在作物根际富集的物种可能导致作物根际在栽培土壤中的群落功能下降。这可能涉及植物激素信号转导的调控,从而对作物生长产生影响。总之,文中所提出的结果提供了土地利用历史通过选择特定的根际分类群对植物表型的影响,为未来植物微生物组影响作物生长的研究提供了基础。主要内容      根系相关的微生物被认为是植物表型的一部分,在植物养分吸收、产生生长激素和防御方面起着重要作用。由于作物有选择地从土体土壤中富集大多数根际微生物,我们假设由农业管理引起的土体土壤群落组成的变化影响植物生长表现。在本研究中,我们对具有不同的管理历史(花生单作和作物轮作)花生根际微生物组进行了宏基因组测序,并宏转录组分析。我们发现,过去的种植历史影响花生根际微生物群落的组装,表明了土壤记忆效应。单作导致根际微生物多样性的降低,几种稀有物种的富集以及与植物性能相关基因的表达减少,如营养物质代谢和植物激素生物合成。此外,单作土壤中的花生植株的生长显著减少,与激素产生相关基因(主要是生长素和细胞分裂素)的下调和脱落酸、水杨酸、茉莉酸和乙烯途径有关的基因的上调相关。这些发现表明,土地利用历史影响作物根际微生物群落和生长表现。参考文献Li, X., Jousset, A., de Boer, W., Carrión, V. J., Zhang, T., Wang, X., & Kuramae, E. E. (2018). Legacy of land use history determines reprogramming of plant physiology by soil microbiome. The ISME Journal. doi:10.1038/s41396-018-0300-0.
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