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合作文章丨川农何淑勤、郑子成教授团队Water Research：长期施肥制度减轻了农业土壤渗滤液中溶解有机质的浸出并改变了其化学多样性

文献信息期刊：Water Research（1区，12.4）作者：Longlong An, Shuqin He, Xin Song, Zicheng Zheng, Tingxuan Li, Le Ha单位：1. 四川农业大学资源学院；2. 四川农业大学林学院；3. 成都栢晖生物科技有限公司；4. 中国农业大学土地科学与技术学院，农业农村部华北耕地保育重点实验室01图文摘要02成果简介近日，四川农业大学资源学院何淑勤、郑子成教授团队在Water Research上发表了题为“Long-term fertilization regimes mitigate dissolved organic matter leaching and alter its chemodiversity in agricultural soil leachate”的研究论文（DOI: 10.1016/j.watres.2026.125762）。该研究基于长达10年的田间定位试验，结合土柱淋溶实验、光谱分析（EEM-PARAFAC）和超高分辨质谱（FT-ICR MS）技术，系统揭示了长期有机肥与秸秆配施（CFOS）对紫色土坡耕地土壤溶解性有机质（DOM）淋溶行为及化学多样性的调控机制。该研究为通过合理施肥实现“增碳减排”的农业可持续发展提供了坚实的理论依据性。03引言土壤溶解性有机质（DOM）是陆地碳库中最活跃...

发布时间: 2026 - 04 - 14

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土壤酶活的分类与方法分析

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发布时间： 2024 - 11 - 21

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土壤酶活性，是指土壤酶催化物质转化的能力。常以单位时间内单位土壤的催化反应产物量或底物剩余量表示。土壤酶活性既包括已积累于土壤中的酶活性，也包括正在增殖的微生物向土壤释放的酶活性，它主要来源于土壤中的微生物，动物和植物。土壤酶活的分类：已知的酶根据酶促反应的类型可分为六大类。即水解酶、氧化还原酶、转移酶、裂合酶、异构酶和连接酶。1. 水解酶类：酶促各种化合物中分子键的水解和裂解反应。主要包括蔗糖酶、淀粉酶、纤维素酶、脲酶、蛋白酶、磷酸酶等。2.氧化还原酶类：指催化两分子间发生氧化还原作用的酶的总称。主要包括脱氢酶、过氧化氢酶、过氧化物酶、硝酸还原酶、亚硝酸还原酶等。3.转移酶类：指能够催化除氢以外的各种化学官能团从一种底物转移到另一种底物的酶类，包括转氨酶、果聚糖蔗糖酶、转糖苷酶等。4.裂合酶类：指催化由底物除去某个基团而残留双键的反应、或通过逆反应将某个基团加到双键上去的反应的酶的总称，主要包括谷氨酸脱羧酶、天门冬氨酸脱羧酶等。5.异构酶类：酶促有机化合物转化成它的异构体的反应。6.连接酶类：是一种催化两种大型分子以一种新的化学键结合一起的酶。测定方法分析：1.生化培养法作为酶活测定的重要方法之一，其又细分为分光光度法和滴定法。分光光度法：其基本原理是酶与底物混合经培养后产生某种带颜色的生成物，可在某一吸收波长下产生特征性波峰，再用分光光度计测定设定的标准物及生成物的吸光值，由此确定酶活性的含量。滴定法：如果产物之一是自由的酸性物质可用此法。如脂肪酶催化脂肪水解释放出脂肪酸，脂肪酸的含量可以通过滴定进行定量，通过计算反应过程中脂肪酸的增加量就可以计算出脂肪酶的酶活力。2.荧光法荧光法是一种基于荧光信号的酶活测定方法，其原理是通过测量酶促反应中荧光物质的变化来推算酶活性。荧光法具有较高的灵敏度和选择性，适用于低浓度底物或产物的检测。不过，荧光法需要特殊的荧光仪器和荧光标记的底物或产物，通常这些产物需要人工合成，准备起来较复杂，且荧光效率随温度而变化，故在整个测定过程中保持温度恒定十分重要，成本较高且操作相对复杂。荧光法实验操作流程：3.酶联免疫试剂盒检测ELISA试剂盒是一种用于定量或定性检测样品中特异性抗原或抗体的试剂组合。它通常由酶标记抗体、酶底物、终止液、标准品、样品稀释液等组成。通过酶促反应，将抗原-抗体反应的特异性反应转化为可测量的光信号，从而实现对样品中抗原或抗体的定量或定性分析。4.微量法活性检测试剂盒检测微量法和多数生化培养法的测定原理都是朗伯比耳定律: A=kbc，不同的是...

青藏高寒草甸氮磷供应调控土壤有机碳的稳定性

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发布时间： 2024 - 11 - 14

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草原土壤储存有439 Gt有机碳（SOC），在调节区域乃至全球气候变化进程中起着重要作用。然而，全球气候变化背景下，大气氮沉降的“施肥效应”强烈地影响着土壤碳储存。因此，明确高寒草甸SOC组分对氮、磷富集的响应和潜在机制至关重要。西南民族大学高寒湿地生态保护研究创新团队马文明副研究员课题组依托青藏高原生态保护与畜牧业高科技研究示范基地和四川若尔盖高寒湿地生态系统国家野外科学观测研究站以红原高寒草甸为研究对象进行了长期氮磷添加实验。采取随机区组用尿素(CO(NH2)2)和过磷酸钙(Ca(H2PO4)2·H2O)设计7个施肥梯度，氮肥施尿素(46.65%N)，磷肥施过磷酸钙(16%P2O5)，施肥梯度分别为（0g尿素+0g过磷酸钙）/m2(CK)、（10g尿素）/m2(N10)、（30g尿素）/m2(N30)、（10g过磷酸钙）/m2(P10)、（30g过磷酸钙）/m2(P30)（5g尿素+5g过磷酸钙）/m2(NP10)、（15g尿素+15g过磷酸钙）/m2(NP30)。研究发现，氮和磷添加导致 SOC含量增加19.95%–36.66%；在相同施肥条件下，SOC含量随着施肥梯度的增加而增加，在N30处理下达到最高；N和P添加促进了脂肪族碳和芳香族碳的富集；与其他处理相比，NP30处理下SOC的稳定性最高，而P10处理下SOC的稳定性最低。表明N和P添加促进了不稳定碳的损失和稳定碳的富集，从而提高了SOC的稳定性，促进了高寒草甸SOC的封存。总体而言，氮磷添加改变了高寒草甸土壤有机碳的理化性质以及SOC的官能团组成，进而促进了SOC积累。因此，在退化的生态系统中添加氮和磷可能是改善土壤碳固存的有效措施。该项研究近期以题为Nitrogen and phosphorus supply controls stability of soil organic carbon in alpine meadow of the Qinghai-Tibetan Plateau发表在生态学领域一区期刊Agriculture Ecosystems & Environment上（IF=6.576）。该研究得到了国家自然科学基金（No. 31600378和U20A2008）、西南民族大学青藏高原研究科技创新团队（2024CXTD10）建设项目、西南民族大学“双一流”建设项目（No. CX2023030）和中央高校优秀学生培养工程项目（2023NYXXS099）等项目资助。Fig. 2. The effects of N and P addition on soil ...

同位素指标测定

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发布时间： 2024 - 11 - 11

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文献解读| 林冠和林下氮素添加对温带森林土壤微生物残体碳的影响不同

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发布时间： 2024 - 10 - 18

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栢晖文献解读原名：Canopy and understory nitrogen additions differently affect soil microbial residual carbon in a temperate forest译名：林冠和林下氮素添加对温带森林土壤微生物残体碳的影响不同期刊：Global Change BiologyIF：10.8发表日期：2024.7（网络首发2024.7）第一作者：Yuanqi Chen，湖南科技大学1背景对森林的研究主要集中在林下加氮对微生物和微生物残体的影响上，但对自然界氮沉积的主要途径——植物冠层氮沉积的影响还没有明确的探讨。本文研究了10年N添加量(25和50 kg N ha−1yr−1)和模式(冠层和林下)对温带阔叶林土壤微生物残体的影响。2假设（1）N的添加减轻了微生物对N的限制，增加了土壤中微生物生物量和微生物残体碳；（2）冠层氮的截留减少了直接进入土壤的氮量，所以林下N的添加对微生物残体的影响比冠层N的添加更强。3材料与方法（1）本研究在中国河南省鸡公山国家级自然保护区大别山国家级森林生态系统野外观测研究站(北纬31°46′~ 31°52′，东经114°01′~ 114°06′)进行；（2）共随机设4个区组。每个块包含5个处理：CT(对照，不添加氮素)、CN25 (25 kg N / ha−1yr−1冠层添加氮素，低氮)、CN50 (50 kg N /ha−1yr−1冠层添加氮素，高氮)、UN25 (25 kg N / ha−1yr−1林下添加氮素，低氮)和UN50 (50 kg N / ha−1yr−1林下添加氮素，高氮)；（3）施氮方式为NH4NO3溶液，4 ~ 10月每月施氮(每年7次)。为了增加树冠N，在每个地块的中心设置了一个35米高的塔，以支持洒水装置和抽水装置，将N溶液输送到森林树冠上（图1）；（4）2022年7月，对应施氮第10年，分别在0 ~ 10 cm和10 ~ 20 cm深度采集土壤样品，共40个样品；（5）测定指标：pH、有机碳、全氮、全磷、磷脂脂肪酸、氨基糖。图1.正常处理中的三个喷撒系统。4结果（1）在0~10 cm土层，无论添加方式如何，N的添加都使土壤pH降低；与CT相比，CN25、CN50和UN50土壤全氮浓度显著增加。在10~20 cm层，尽管土壤pH趋于较低，土壤有机碳和全磷浓度似乎较高(表1)。表1.施氮第10年各处理土壤理化性质（2）无论冠层还是林下模式，N添加对土壤微生物PLFA均无显著影响（表2），这表明微生物...

土壤碳矿化速率（呼吸速率）的测定

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发布时间： 2024 - 09 - 20

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一、试剂药品浓盐酸，氢氧化钠，氯化钡，酚酞二、试剂配制2.1.0.05mol/l盐酸：取4.16ml浓盐酸缓缓加入1000mlUP 水中。2.2.0.1mol/l氢氧化钠：0.4g氢氧化钠用UP水定容至100ml。2.3.酚酞指示剂：称取0.5g酚酞，用95%乙醇溶解定容至100ml。2.4.11mol/l氯化钡溶液：20.82g氯化钡用UP水定容至100ml。三、洗涤方法所有新的玻璃器皿：用洗涤剂清洗干净后，再用自来水洗，再超声，再用UP水冲洗，再放入90度烘箱烘干。四、实验方法4.1 土壤预培养：称取适量土壤样品置于常温下预培养数天，使土壤恢复到常温状态。4.2 密闭培养：将恢复到常温状态的样本，称取10g置于250ml广口具塞瓶中，内置盛有10ml0.1mol/l氢氧化钠溶液的小玻璃瓶，用蒸馏水调节土壤湿度至其最大持水量的60%，5℃恒温培养7天。4.3 测定：培养结束后取出里面盛氢氧化钠的小玻璃瓶，先加入2ml氯化钡溶液，再加入2滴酚酞指示剂，再用0.05mol/l的盐酸滴定至红色消失，记录滴定体积，计算出CO2的释放量，同时做空白对照(空白用水代替）。更多检测相关讯息so栢晖生物了解~

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