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一、试剂药品浓盐酸,氢氧化钠,氯化钡,酚酞二、试剂配制2.1.0.05mol/l盐酸:取4.16ml浓盐酸缓缓加入1000mlUP 水中。2.2.0.1mol/l氢氧化钠:0.4g氢氧化钠用UP水定容至100ml。2.3.酚酞指示剂:称取0.5g酚酞,用95%乙醇溶解定容至100ml。2.4.11mol/l氯化钡溶液:20.82g氯化钡用UP水定容至100ml。三、洗涤方法所有新的玻璃器皿:用洗涤剂清洗干净后,再用自来水洗,再超声,再用UP水冲洗,再放入90度烘箱烘干。四、实验方法4.1 土壤预培养:称取适量土壤样品置于常温下预培养数天,使土壤恢复到常温状态。4.2 密闭培养:将恢复到常温状态的样本,称取10g置于250ml广口具塞瓶中,内置盛有10ml0.1mol/l氢氧化钠溶液的小玻璃瓶,用蒸馏水调节土壤湿度至其最大持水量的60%,5℃恒温培养7天。4.3 测定:培养结束后取出里面盛氢氧化钠的小玻璃瓶,先加入2ml氯化钡溶液,再加入2滴酚酞指示剂,再用0.05mol/l的盐酸滴定至红色消失,记录滴定体积,计算出CO2的释放量,同时做空白对照(空白用水代替)。更多检测相关讯息so栢晖生物了解~
发布时间: 2024 - 09 - 20
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发布时间: 2021 - 09 - 17
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一、 试剂:1、0.2mol/l盐酸溶液2、0.1mol/l氢氧化钠溶液3、酚酞指示剂二、 主要仪器:电热板,锥形瓶三、 试样的制备:取风干的实验室待测样品充分混匀后,取待测样品充分混匀后,按四分法缩减至100g,粉碎,然后全部通过60目孔径筛,装入样品袋备用。 四、 分析步骤:称取适量土壤样本,放入150ml锥形瓶中,然后准确加入0.2mol/l盐酸溶液10ml,轻轻摇匀,放置过夜,使之彻底反应。将锥形瓶放于电热板上微沸3-5分钟以除去溶液中CO2,冷后用滤纸过滤,并用除去CO2的去离子水洗涤数次,收集所有滤液,加3滴酚酞指示剂,将滤液微热后用0.1 mol/l氢氧化钠溶液滴定至粉红色即为终点。五、 结果计算:C1、C2—HCL与NaOH钠溶液浓度(mol/l);V1、V2—HCL与NaOH钠溶液体积(ml);M—土壤样品质量(g);0.05—1/2CaCO3摩尔质量(kg/mol)。 参考文献:鲍士旦.土壤农化分析.北京:中国农业出版社,1999:30-33,201-205
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发布时间: 2021 - 09 - 14
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果糖是一种单糖,是葡萄糖的同分异构体,分子式为C6H12O6。它有一下一些特征:以游离状态大量存在于水果的浆汁和蜂蜜中,还能与葡萄糖结合生成蔗糖;纯净的果糖为无色晶体,熔点为103~105℃,它不易结晶,通常为黏稠性液体,易溶于水、乙醇和乙醚。以下给大家分享下如何通过间苯二酚比色法检测植物中的果糖。一、实验试剂所有试剂除注明者外,均为分析纯。1.1  0.1%间苯二酚: 称取0.1g间苯二酚溶液于100mL 95%乙醇溶液(棕色瓶内保存);1.2 标准果糖溶液:称取50mg烘至衡重的果糖,用80%乙醇配成1000ml溶液,得到质量浓度为50ug/ml的果糖溶液;1.3 80%乙醇;1.4 浓盐酸。二、实验仪器分光光度计、恒温水浴锅、电子天平、烘箱、刻度离心管、带塞试管、漏斗等。三、试样的制备取风干的实验室待测样品充分混匀后,按四分法缩减至 100g,粉碎,籽粒全部通过100目筛,装入样品瓶备用。四、分析步骤4.1 样品提取称取50mg样品倒入10ml刻度离心管内加入4ml 80%乙醇,至于80℃水浴中不断搅拌40min ,离心,收集上清液,其残渣加2ml 80%乙醇重复提2次,合并上清液。80%乙醇定容至10ml,过滤后取滤液测定。4.2 制作标准曲线按照下表准备6支试管,进行编号加试剂:编号123456果糖标准液/ml00.10.20.30.40.580%乙醇/ml10.90.80.70.60.5HCl/ml111111间苯二酚/ml22222280℃水浴反应10min,冷却至室温,在480nm处测定OD值,以0浓度管调零。绘制成果糖质量浓度-OD 值曲线。4.3 显色测定取植物提取液代替标准果糖溶液,按上述步骤进行果糖含量的测定,读取 OD值,从标准曲线得到提取液总的果糖含量,然后再行计算样品中的果糖含量。五、结果计算果糖含量(%)=【(a×V总×n)/(V测×m×106)】×100%式中:a——由标曲计算所得还原糖含量,ug;V总——样品提取液总体积,ml;n——为样品提取液稀释倍数V测——显色测定时吸取样品液体积,ml;m——样品干重,g;106——ug换算成g 。
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发布时间: 2021 - 09 - 10
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氮是植物需要较多的必须元素之一,在土壤中呈交换性按状态存在的铵态氮,可以被植物直接吸收利用,是速效性氮素。目前,测定铵态氮的方法主要有靛酚蓝分光光度法、纳氏试剂比色法、滴定法、荧光法、电极法等。栢晖土壤铵态氮常用检测方法实验步骤:01:浸提称取适量土样,准确到0.01g,置于150mL三角瓶中,按一定固液比加入氯化钾溶液,塞紧塞子,在振荡机上振荡1h。取出静置,待土壤—氯化钾悬浊液澄清后,吸取一定量上层清液进行分析。02:比色吸取土壤浸出液2mL~10mL(含NH4+—N 2-25ug)放入50mL容量瓶中,用氯化钾溶液补充至10mL,然后加入苯酚溶液5mL和次氯酸钠碱性溶液5mL,摇匀。在20℃左右的室温下放置1h后(注1),加掩蔽剂1mL以溶解可能产生的沉淀物,然后用水定容至刻度。2h后,用1cm比色皿在625nm波长处(或红色滤光片)进行比色,读取吸光度。03:工作曲线分别吸取0.00、2.00、4.00、6.00、8.00、10.00mL  NH4+—N标准液于50mL容量瓶中,各加10mL氯化钠溶液,同(2)步骤进行比色测定。其他土壤铵态氮检测方法靛酚蓝分光光度法2mol•L-1KCl溶液浸提土壤,把吸附在土壤胶体上的NH4+及水溶性NH4+浸提出来。土壤浸提液中的铵态氮在强碱性介质中与次氯酸盐和苯酚作用,生成水溶性染料靛酚蓝,溶液的颜色很稳定。在含氮0.05~0.5mol•L-1的范围内,吸光度与铵态氮含量成正比,可用比色法测定。纳氏试剂比色法用氧化镁的弱碱性蒸馏出土壤样品中铵态氮被盐酸溶液吸收,在碱性条件下与纳氏试剂络合生成黄色络合物,进行比色测定。讨论:对不同样品土壤中按态氮测量结果显示:氧化镁蒸馏法与扩散吸收法具有相同的准确度,但扩散吸收法检测时间较长,测定过程氧化镁易沿水膜上爬沾污内室,不好操作。蒸馏法很好的避免了扩散法的问题,操作简单,检测效率高,为土壤按态氮测定提供了一种蒸馏快速、结果准确可靠的检测方法。滴定法通过(氯化钠或氯化钾)浸提剂提取,经蒸馏滴定检测土壤中的铵态氮。大致步骤如下:称取新鲜土样10g于三角瓶中,分别加入一定浓度的氯化钠或氯化钾浸提剂50mL,在温度为25℃的水浴振荡器中震荡30min,使用滤纸干过滤后,吸取一定体积的浸出液于消煮管中,加入120g/L的氧化镁悬浊液10mL,经凯式定氮装置蒸馏,5mL浓度为20g/L的硼酸吸收后,用0.005moI/L的硫酸溶液反滴定馏出液。讨论:目前,我国土壤中铵态氮的检测没有统一的国家标准或行业标准,浸提方法多种多样,各种浸提方法之间存在着一定的误差,数据间无可比性,可以...
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发布时间: 2021 - 09 - 08
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酸性土壤是低pH值土壤的总称,包括红壤、黄壤、砖红壤、赤红壤和灰化土等。酸性土壤地区降水充沛,淋溶作用强烈,盐基饱和度较低,酸度较高。了解植物对土壤环境的生理反应和抗逆机理,对发展农业生产是十分重要的。此前,小编也为大家介绍过土壤中的速效磷是如何检测的,今天我们就来聊聊关于酸性土壤中速效磷是如何检测的。试剂提取剂(0.05mol/LHCl -0.025mol/l(1/2H2SO4)):精确量取浓HCl 4mL和浓H2SO4 0.7mL,放人1L容量瓶中,加水定容。主要仪器往复振荡机、万分之一分析天平、ICP-oes等。试样的制备取风干的实验室待测样品充分混匀后,取待测样品充分混匀后,按四分法缩减至 100g,粉碎,然后全部通过18目孔径筛,装入样品袋备用。分析步骤称取适量土样(6g),放入50mL三角瓶中,按土水比1:5加入双酸混合提取剂(30ml),在振荡机上振荡5min,过滤,提取液用ICP-oes直接测定P含量c。结果计算C:ICP-oes 测得提取液中P浓度,mg/L;Vt:提取液体积,ml;M : 样品干重,g。
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发布时间: 2021 - 09 - 02
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赤霉素的测定赤霉素(Gibberellins,GAs)作为植物体内广泛存在的一类生长调节剂,是高等植物体内的一类四环二萜羧酸化合物,参与调控植物种子萌发,下胚轴伸长,叶片伸展,花、果实及种子发育等诸多生理过程。截至1976 年就从植物中分离鉴定出32种赤霉素,至今,发现的赤霉素的种类己有百种之多。研究表明,赤霉素在植物抵抗非生物胁迫中也发挥着重要作用,主要通过调节GAs的生物合成、信号转导及其生物活性,以提高植物对非生物胁迫的耐受性。一、实验方法及原理本次实验通过提取样品中植物内源激素,再以安捷伦1290高效液相色谱仪串联AB公司Qtrap6500质谱仪,测定植物内源激素。1.试剂以下所有试剂如无特别注明,均为分析纯。实验用水为蒸馏水,去离子水或相当纯度的水。赤霉素(GA3)标准品、CNW C18 QuEChers填料、色谱级甲醇、乙腈、乙腈(样品提取液)。2.仪器设备(1)TG-16G台式高速离心机、电子天平、Agilent 1290高效液相色谱仪、SCIEX-6500Qtrap(MSMS)、气浴恒温摇床、超声清洗仪、水浴氮吹仪。3.标曲溶液配置(1)取甲醇溶液990 μl加入1.5 ml离心管,加入500 μg/ml每种激素标准品储备液各2 μl,震荡均匀,配置为终浓度1 μg/ml的使用母液以备后续使用。(2)取甲醇溶液999.9 μl、999.8 μl、999.5 μl、999 μl、998 μl、995 μl、980 μl分别加入1.5 ml离心管,而后取步骤(1)中配置的母液分别0.1 μl、0.2 μl、0.5 μl、1 μl、2 μl、5 μl、20 μl顺序加入上述甲醇溶液中,配置为终浓度0.1 ng/ml、0.2 ng/ml、0.5 ng/ml、1 ng/ml、2 ng/ml、5 ng/ml、20 ng/ml的标曲溶液。4.流动相配置(1)有机相:取色谱纯甲醇900 ml加入1 L容量瓶,加入1 ml甲酸,以甲醇定容至1 L,颠倒混匀。(2)无机相:取超纯水900 ml加入1 L容量瓶,加入1 ml甲酸,以超纯定容至1 L,颠倒混匀。5.植物激素提取(1)准确称取样品约0.3-0.8 g,加入10倍体积乙腈溶液;(2)4℃提取过夜,12000 g离心5 min,取上清液;(3)沉淀再次加入5倍体积乙腈溶液,提取两次,合并所得上清液;(4)加入15-40 mg C18填料,剧烈震荡30 s,10000 g离心5 min,取上清液;(5)氮气吹干,以200 μl甲醇复溶,过0.22 μm有机相滤膜,放入-20℃冰箱待上机检测。(6)进样体积:2 ...
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